PHARMA
& BIOTECH
Fermentacja Escherichia coli do produkcji białek rekombinowanych od dziesięcioleci odgrywa kluczową rolę w nowoczesnej biotechnologii i dziś jest standardowo realizowana w bioreaktorach, aby zapewnić powtarzalność procesu i możliwość skalowania.
Tak było również w przypadku europejskiego instytutu, który zainwestował w linię namnażania obejmującą skalowanie od 5‑litrowych bioreaktorów szklanych, przez 30‑litrowy bioreaktor zaszczepowy, aż do 150‑litrowego bioreaktora głównego.
Proces obejmuje pomiary inline pH / tlenu rozpuszczonego / glukozy, systemy CIP/SIP, etap downstream z wykorzystaniem kompaktowej wirówki, sonikacji i ultrafiltracji, a także zbiornik do inaktywacji odpadów (kontrola pH i temperatury) — wszystko zintegrowane w ograniczonej, biurowej przestrzeni.
Cel: powtarzalna kontrola procesu upstream oraz czyste i bezpieczne przekazanie materiału do etapu downstream. Odkryj, jak Boccard wsparł tę firmę w realizacji jej celów.
Jaka jest historia E. coli i fermentacji białek rekombinowanych?
Historycznie, metody rekombinacji DNA z wykorzystaniem E. coli doprowadziły do opracowania ludzkiej insuliny — pierwszego leku rekombinowanego zatwierdzonego przez FDA w 1982 roku.
Był to kamień milowy, który otworzył nowoczesną erę biofarmaceutyków i udowodnił, że genetycznie modyfikowane bakterie mogą bezpiecznie wytwarzać ludzkie białka w skali przemysłowej.
Obecnie genetycznie modyfikowane E. coli są wykorzystywane do produkcji ludzkiego hormonu wzrostu, interferonu alfa‑2b (stosowanego w leczeniu przewlekłego zapalenia wątroby oraz niektórych nowotworów), interleukiny‑2 (w immunoterapii przerzutowego raka nerki i czerniaka), a także szerokiej gamy enzymów terapeutycznych i przemysłowych.
Należą do nich m.in. L‑asparaginaza stosowana w leczeniu ostrej białaczki limfoblastycznej oraz różne biokatalizatory wykorzystywane w procesach produkcyjnych.
Co w tym przypadku oznacza „fermentacja” – etap hodowli czy etap oczyszczania?
Fermentacja upstream: namnażanie inokulum (seed train) – w tym przypadku genetycznie modyfikowane E. coli – oraz produkcja w bioreaktorach z mieszadłem, z kontrolą pH, tlenu rozpuszczonego (DO) i temperatury, napowietrzania, mieszania i strategii dokarmiania, a także etapu indukcji.
W wyniku tego etapu powstaje biomasa oraz docelowe białko, wytwarzane wewnątrz komórek E. coli (a w niektórych przypadkach także wydzielane na zewnątrz).
Downstream zaczyna się po zakończeniu cyklu fermentacji:
- Wirowanie (centrifugacja) w celu odzysku produktu, oparte na mechanicznym rozdziale składników według gęstości.
- Sonikacja – rozbijanie komórek w celu uwolnienia białek produkowanych wewnątrz biomasy.
- Ultrafiltracja w celu zagęszczenia i klarowania produktu przed etapem oczyszczania chromatograficznego.
Jakie wyzwania pojawiają się przy przejściu z bioreaktorów szklanych do bioreaktorów przemysłowych?
Skalowanie procesu z aparatury szklanej do bioreaktorów o pojemności 30 i 150 litrów nie polega jedynie na „zwiększeniu objętości”. Wynika to z faktu, że hydrodynamika, wymiana masy i ciepła oraz zapewnienie jałowości procesu ulegają wówczas zasadniczej zmianie.
Sposób sterylizacji zmienia się – z autoklawowania na sterylizację CIP/SIP:
W skali 5 litrów naczynia oraz linie procesowe – zwłaszcza wykonane ze szkła – są zazwyczaj sterylizowane w autoklawie, poza instalacją (ex situ).
W przypadku bioreaktorów o pojemności 30 i 150 litrów ze stali nierdzewnej sterylizacja odbywa się na miejscu (SIP), z wykorzystaniem pary wodnej doprowadzanej przez płaszcz grzewczy i powiązane rurociągi.
Ta zmiana wymaga:
zautomatyzowanych sekwencji sterylizacji, precyzyjnej kontroli pary, zwalidowanych czasów wygrzewania,
oraz pełnego objęcia sterylizacją sond, filtrów i połączeń, aby zapewnić jałowość całej ścieżki przepływu procesu.
Utrata bezpośredniego, wizualnego nadzoru nad przebiegiem fermentacji:
W aparaturze szklanej operatorzy polegają głównie na bezpośredniej obserwacji procesu. W przypadku instalacji ze stali nierdzewnej znacznie większą rolę odgrywa aparatura pomiarowa i dane procesowe: pomiary pH, tlenu rozpuszczonego i glukozy, a także temperatura, ciśnienie oraz przepływy gazów stanowią podstawę podejmowania decyzji podczas rozbudowy inokulum, indukcji i zbioru.
Zestawienia przebiegów wsadów (batch overlays), alarmy oraz trendy z systemów historycznych zastępują obserwację „naocznie” i pomagają utrzymać powtarzalność procesu z cyklu na cykl.
Zarządzanie temperaturą staje się problemem sterowania, a nie tylko utrzymaniem zadanej wartości:
Większe zbiorniki ze stali nierdzewnej charakteryzują się większą bezwładnością cieplną. Układy z podwójnym płaszczem grzewczo‑chłodzącym, dostępna wydajność mediów pomocniczych oraz odpowiednio dostrojone pętle regulacji muszą skutecznie radzić sobie zarówno z ciepłem metabolicznym powstającym podczas wzrostu komórek, jak i z szokami termicznymi występującymi podczas indukcji, CIP i SIP, bez przekroczeń zadanych wartości.
Celem jest uzyskanie stabilnego profilu temperaturowego, który chroni jakość produktu i pozwala utrzymać czasy cyklu pod kontrolą
Przenoszenie masy gazowej i mieszanie muszą zostać zaprojektowane na nowo:
Typ mieszadła, geometria spargera, skład mieszaniny gazowej, ciśnienie wsteczne oraz strategia dozowania środków antypiennych są dobierane tak, aby zapewnić wymaganą wydajność transferu tlenu (OTR) oraz odpowiedni poziom homogenizacji w skali przemysłowej.
Aby spełnić ten cel, niezbędna jest ekspertyza z zakresu inżynierii mieszania – tak, by dopasować pobór tlenu, uniknąć gradientów w objętości reaktora oraz kontrolować siły ścinające, dzięki czemu komórki w bioreaktorze 150‑litrowym doświadczają tych samych warunków, które zapewniały oczekiwane wyniki w skali 5 litrów.
Projekt higieniczny, CIP oraz inaktywacja odpadów stają się integralną częścią procesu:
Skalowanie procesu wprowadza ograniczenia związane z myciem instalacji i zgodnością regulacyjną. Instalacje o pełnym spływie, zwalidowane sekwencje CIP oraz zamknięte transfery ograniczają ryzyko zanieczyszczeń.
W przypadkach, gdy stosowane są organizmy genetycznie modyfikowane lub występują wymagania bezpieczeństwa biologicznego, dedykowany zbiornik do inaktywacji odpadów z kontrolą temperatury i pH stanowi udokumentowaną barierę bezpieczeństwa przed ich odprowadzeniem.
Automatyzacja i ergonomia mają kluczowe znaczenie w rzeczywistych warunkach przestrzennych:
Przejście ze stanowiska laboratoryjnego do pomieszczenia typu biurowego oznacza konieczność zaprojektowania kompaktowej linii technologicznej, która mimo ograniczonej przestrzeni zapewnia bezpieczny dostęp, czytelne prowadzenie mediów oraz łatwą obsługę.
Zautomatyzowane receptury procesowe upraszczają rutynowe operacje i ograniczają zmienność wynikającą z pracy operatorów, jednocześnie zachowując elastyczność niezbędną w pracach B+R.
W jaki sposób Boccard wsparł klienta w modernizacji procesu produkcji białek rekombinowanych?
Boccard zaprojektował i dostarczył 30‑litrowy bioreaktor zaszczepowy (z pomiarami pH / DO / glukozy), zasilający 150‑litrowy bioreaktor główny; zintegrował wirówkę, system sonikacji i ultrafiltracji do kompaktowego odzysku produktu w skali pilotażowej oraz zainstalował system inaktywacji odpadów (kontrola temperatury i pH).
Cały skid procesowy i media pomocnicze dostosowano do niewielkiego pomieszczenia typu biurowego, z pełnym CIP/SIP oraz automatyzacją, zapewniającą powtarzalność kolejnych cykli.
W skrócie, przed Boccardem postawiono wyzwanie zaprojektowania i realizacji linii fermentacyjnej zgodnej z wymaganiami środowiskowymi i zasadami bezpieczeństwa, w szczególności w zakresie inaktywacji odpadów, a jednocześnie ergonomicznie dopasowanej do ograniczonej przestrzeni oraz wyposażonej w wszechstronną i łatwą w obsłudze automatykę.
Które bioreaktory Boccard wspierają fermentację i skalowanie procesu poza etap pilotażowy?
Te same filary stanowią standard w TEKINBIO™, bioreaktorze Boccard przeznaczonym do fermentacji i skalowania procesów, a Track Advance pełni rolę cyfrowego kręgosłupa umożliwiającego monitoring w czasie rzeczywistym, zarządzanie recepturami oraz porównywanie partii produkcyjnych.
To praktyczny i możliwy do audytu pomost między skalą pilotażową a przemysłową.
TEKINBIO™ integruje:
- Zoptymalizowane napowietrzanie: geometria spargera, ciśnienie w przestrzeni nad cieczą (headspace) oraz wydajny transfer tlenu (O₂).
- Zaawansowane mieszanie: homogenizacja i kontrola sił ścinających zwalidowane metodami CFD (numeryczna mechanika płynów).
- Precyzyjna kontrola temperatury
- Projekt higieniczny z systemami CIP/SIP
- Track Advance do zarządzania recepturami, porównywania partii produkcyjnych oraz wsparcia zgodności regulacyjnej.
Sprawdź, jak wspieramy procesy fermentacji w branży Pharma & Biotech.
GŁÓWNE ELEMENTY PROJEKTU
Linia dwureaktorowa:
30‑litrowy bioreaktor zaszczepowy (pH / DO / glukoza) → 150‑litrowy bioreaktor główny;
pełne CIP/SIP;
kompaktowe moduły downstream (wirówka, sonikacja, ultrafiltracja).
Inaktywacja odpadów: dedykowany zbiornik z kontrolą temperatury i pH, stosowany przed odprowadzeniem ścieków do kanalizacji.
Ograniczenia przestrzenne rozwiązane: integracja instalacji w pomieszczeniu typu biurowego dzięki dostosowanym mediom oraz ergonomicznemu projektowi zapewniającemu bezpieczną i wygodną obsługę.
Ramy bezpiecznego skalowania procesu: przemyślany projekt transferu tlenu (OTR) i mieszania, adekwatna wydajność cieplna, pełne zapewnienie aseptyki oraz identyfikowalność i śledzenie receptur.
Zakres prac
- Inżynieria i prefabrykacja:
projekt i wykonanie linii bioreaktorów 30 L + 150 L z analityką inline, zintegrowanymi modułami downstream (wirówka, sonikacja, ultrafiltracja), szafami sterowniczymi oraz modułową instalacją rurociągową, zaprojektowaną z myślą o kompaktowych pomieszczeniach i łatwym montażu. - Media pomocnicze i projekt higieniczny:
przygotowanie instalacji pod CIP/SIP, podłączenia pary, gazów oraz wody procesowej; higieniczny układ instalacji zapewniający aseptykę i powtarzalność procesu; media cieplne (wytwornica pary / agregat chłodniczy). - Wsparcie procesu (kampanie białek rekombinowanych):
wsparcie fermentacji od zaszczepu do bioreaktora głównego (np. 5 L szkło → 30 L → 150 L), obejmujące strategię indukcji oraz okna operacyjne (pH / DO / temperatura / OTR, prędkość mieszania), wraz z dokumentacją umożliwiającą rzetelne porównywanie partii oraz płynne przekazanie procesu do etapu downstream. - Path to industrialisation with TEKINBIO™ and Track Advance: Transfer pilot learnings into TEKINBIO™, paired with Track Advance for real‑time monitoring, recipe governance, lot‑to‑lot analytics, and regulatory traceability as a proven path from pilot to industrial.
Planujesz projekt?
Nasi Klienci
Oni nam ufają













